doi: 10.56294/saludcyt20241162
REPORTE DE CASO
Study of case: Monitoring of the method of decontamination with chlorine dioxide in rooms previously occupied by patients colonized with multidrug-resistant Acinetobacter
Reporte de caso: Monitoreo del método de descontaminación con dióxido de cloro en habitaciones previamente ocupadas por pacientes colonizados con Acinetobacter multirresistente
Manuel Aparicio-Alonso1 
*, Alma Guadalupe
Avalos-Contreras1 *, Verónica Torres-Solórzano1 *
1Centro Médico Jurica, Querétaro, México.
Citar como: Aparicio-Alonso M, Avalos-Contreras AG, Torres-Solórzano V. Study of case: Monitoring of the method of decontamination with chlorine dioxide in rooms previously occupied by patients colonized with multidrug-resistant Acinetobacter. Salud, Ciencia y Tecnología. 2024; 4:1162. https://doi.org/10.56294/saludcyt20241162
Enviado: 04-02-2024 Revisado: 09-05-2024 Aceptado: 20-07-2024 Publicado: 21-07-2024
Editor: Dr.
William Castillo-González
ABSTRACT
Contamination of hospital surfaces by patients colonized with Acinetobacter represents a risk of nosocomial infections. The imperative need to prevent intrahospital transmission and dissemination has prompted the implementation of approved agents with high biocidal capacity and low toxicity. In one hospital, it was documented in real time the safety of decontamination with ClO2 at 60 ppm for 30 minutes in unoccupied inpatient rooms by antimicrobial culture and ATP bioluminescence assays. After decontamination, sampling of surfaces occupied by patients colonized with Acinetobacter, no viable culturable spores or metabolic activity was reported. At follow-up, previous and subsequent patients did not develop Acinetobacter infections, and no sign of microbiological contamination was observed after room decontamination. These results suggest that ClO2 can be used as a safe and economical antimicrobial agent with feasibility for integration into medical practices.
Keywords: Decontamination; Nosocomial Infection; Chlorine Dioxide; Acinetobacter Infections.
RESUMEN
La contaminación de superficies hospitalarias por pacientes colonizados con Acinetobacter representa un riesgo a infecciones nosocomiales. La necesidad imperante de prevenir la transmisión y la diseminación intrahospitalaria ha llevado a la implementación de agentes aprobados con alta capacidad biocida y baja toxicidad. En un hospital, se documentó en tiempo real la seguridad de la descontaminación con ClO2 a 60 ppm durante 30 minutos en las habitaciones de hospitalización desocupadas, mediante los análisis antimicrobianos de cultivo y bioluminiscencia ATP. Tras la descontaminación, en el muestreo de superficies ocupadas por los pacientes colonizados con Acinetobacter no se reportó esporas viables cultivables ni actividad metabólica. En el seguimiento, los pacientes previos y subsiguientes no desarrollaron infecciones por Acinetobacter, asimismo, después de la descontaminación de la habitación no se observó señal de contaminación microbiológica. Estos resultados sugieren que el ClO2 puede emplearse como un agente antimicrobiano seguro y económico, con viabilidad para integrarse en prácticas médicas.
Palabras clave: Descontaminación; Infección Nosocomial; Dióxido de Cloro; Infecciones por Acinetobacter.
INTRODUCCIÓN
El Acinetobacter multirresistente es una amenaza nosocomial y un problema para la salud pública debido a su alto potencial de letalidad, su alta capacidad de propagación y la habilidad de formar biopelículas.(1) La presencia de pacientes colonizados y un entorno contaminado se consideran las principales vías de transmisión y de persistencia de la resistencia antibiótica en los hospitales.(2) Por lo tanto, en el ámbito clínico, la contención y la seguridad higiénica se han convertido en prioridades, especialmente en lo que respecta a las superficies inertes y el entorno cercano a las instalaciones de atención al paciente.(3)
Sin embargo, la descontaminación de estas áreas se ve obstaculizada por los costos económicos de los agentes y la capacidad de antimicrobiana de los mismos. Por otro lado, el dióxido de cloro (ClO2) es un compuesto inorgánico superoxidante, esterilizante y no mutagénico con la cualidad de penetrar en sitios reducidos.(4) La aplicación ClO2 ha sido respaldada como uno de los métodos esterilizantes económicamente viables, conforme a lo establecido en la Norma Oficial Mexicana, NOM-045-SSA2-2005, y la Organización Mundial de la Salud.
Considerando la importancia crucial que tiene el control de infecciones nosocomiales provocadas por Acinetobacter multirresistente y la evidencia consolidada de las propiedades antimicrobianas del ClO2, hemos documentado la seguridad antimicrobiana del método de descontaminación con ClO2 en las habitaciones del Centro Médico Jurica. Con el objetivo de proponer la integración del ClO2 en las prácticas actuales para el control de infecciones.
MÉTODO
Protocolo de descontaminación por aerosoles
Después del egreso de cada paciente, la habitación fue descontaminada con la aspersión de ClO2. El ClO2 se generó por medio de la oxidación de clorito de sodio al 28 % (NaClO2) con ácido clorhídrico (HCl) al 4 % como activador. La solución con concentración de 60 ppm, se preparó combinando 20 ml de ClO2 a una concentración de 3,000 ppm con un litro de agua desionizada. Se utilizó el Sistema de Limpieza fijo Rainbow® Modelo RHCS19 con filtro de aire High Efficiency Particle Arresting, aplicando 1,000 mililitros de solución de ClO2 a 60 ppm durante un ciclo de activación de 30 minutos.
Evaluación de actividad microbiana
Posterior al método de descontaminación, se llevó a cabo una replicación del cultivo con base en el patógeno detectado al ingreso del paciente, mediante un hisopado del colchón con los hisopos de transporte Transystem™. El valor control negativo de unidades formadoras de colonias (UFC) fue de < 2 UFC/cm2.(5) Además, después del método de descontaminación, se tomaron muestras de colchón o sillón reclinable utilizando los hisopos de análisis LUCIPAC™ para la detección de ATP en superficies. Cada hisopo se colocó en un iluminómetro EnSURE y se registró la lectura en unidades relativas de luz (URL).(6) El valor de control de las URL para aprobar la descontaminación fue de < 5 URL/cm2.
RESULTADOS
En el Centro Médico Jurica ingresaron a habitaciones de hospitalización dos pacientes con presencia de Acinetobacter multirresistente, ambos con diferente procedencia y en distinto periodo de tiempo. En el primer paciente se detectó Acinetobacter baumanii, el cual utilizó la habitación 1; en el segundo paciente se detectó Acinetobacter baumanii complex y Acinetobacter haemolyticus, el cual ocupó la habitación 2. Los patógenos exhibieron un fenotipo multirresistente con resistencia observada a más de tres familias de antibióticos (tabla 1).
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Tabla 1. Pruebas de resistencia antibiótica de Acinetobacter baumanii |
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Habitación |
Patógeno |
Antibióticos resistentes |
Antibióticos sensibles |
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Hab 2 |
Acinetobacter baumanii complex Acinetobacter haemolyticus |
Ampicilina-Sulbactam Amicacina Ceftriaxona Ceftazidima Cefotaxima Ciprofloxacina Cefepima Ertapenem Gentamicina Imipenem Meropenem Tetraciclina Tigeciclina Tobramicina |
Levofloxacina Trimetropin-Sulfametazona Colistina |
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Hab 1 |
Acinetobacter baumanii |
Ampicilina-Sulbactam Amicacina Ceftriaxona Ceftazidima Cefotaxima Ciprofloxacina Cefepima Gentamicina Levofloxacina Meropenem Trimetropin-Sulfametazona Tetraciclina Tigeciclina Tobramicina |
Colistina |
Para mostrar la seguridad antimicrobiana de la descontaminación con ClO2 y la inexistencia de transmisión intrahospitalaria de Acinetobacter multirresistente, se presentan los microorganismos detectados al ingreso del paciente y la posterior actividad microbiana evaluada en superficie tras la descontaminación con ClO2 de cada habitación. De la misma manera, para ampliar la documentación, se consideran a tres pacientes egresados que estuvieron antes y después de los pacientes colonizados con Acinetobacter (tabla 2).
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Tabla 2. Registro de microorganismos detectados y actividad antimicrobiana después de la descontaminación con ClO2 en superficies de uso frecuente por los pacientes. Se reporta sobre tres pacientes anteriores (pre) y tres pacientes posteriores (post) a la ocupación de la habitación por pacientes con presencia de Acinetobacter |
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Habitación |
Paciente |
Patógenos Detectados en Paciente |
Superficie Cultivada |
Re-cultivo selectivo |
Superficie Muestreada |
Prueba ATP |
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Hab 2 |
Previo A |
Streptococcus pneumoniae y |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
NA |
NA |
|
Hab 2 |
Previo B |
Clostridium difficile GDH |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
Sillón reclinable |
0 |
|
Hab 2 |
Previo C |
Candida albicans y |
Colchón
|
< 2 UFC/cm2
|
NA
|
NA
|
|
Hab 2 |
Presencia Acinetobacter |
Streptrophomonas maltophilia, Candida albicans, Acinetobacter
baumanii complex, Acinetobacter haemolyticus y |
Colchón
|
< 2 UFC/cm2
|
Sillón reclinable y colchón |
0
|
|
Hab 2 |
Post A |
Ninguno |
NA |
NA |
Timbre PX |
0 |
|
Hab 2 |
Post B |
Ninguno |
NA |
NA |
Mesa de PX |
0 |
|
Hab 2 |
Post C |
Ninguno |
NA |
NA |
Manija |
0 |
|
Hab 1 |
Previo A |
IgG a Rubeola y Citomegalovirus |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
NA |
NA |
|
Hab 1 |
Previo B |
SARS CoV-2 |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
NA |
NA |
|
Hab 1 |
Previo C |
Rinovirus y Enterovirus humano |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
NA |
NA |
|
Hab 1 |
Presencia Acinetobacter |
Clostridium difficile GDH Toxina A-B, Acinetobacter baumanii y Candida tropicalis |
Colchón
|
< 2 UFC/cm2
|
Sillón reclinable y colchón |
0
|
|
Hab 1 |
Post A |
IgG a Toxoplasma gondii y Anti-Citomegalovirus |
Colchón |
< 2 UFC/cm2 |
NA |
NA |
|
Hab 1 |
Post B |
Ninguno |
NA |
NA |
NA |
NA |
|
Hab 1 |
Post C |
Ninguno |
NA |
NA |
Colchón |
0 |
DISCUSIÓN
El ClO2 es un biocida económico de amplio espectro con bajo riesgo de toxicidad.(4) Se ha demostrado que en concentraciones adecuadas el ClO2 es selectivo por tamaño hacia microorganismos, debido a su capacidad para oxidar las proteínas y agotar las reservas de glutatión, lo que desencadena la apoptosis.(4) Además, se ha confirmado que el método de descontaminación con ClO2, tanto a concentraciones altas de 100 ppm por 15 s como a concentraciones extremadamente bajas de 0,01 ppm por 3 h, puede inactivar cepas de patógenos nosocomiales perjudiciales.(7,8)
Debido a que Acinetobacter multirresistente forma biopelículas, la capacidad de sobrevivir en el mobiliario médico durante largos periodos de tiempo incrementa el riesgo de transmisión y diseminación.(9) Lo anterior, exige estándares de limpieza hospitalarios rigurosos que evalúen la efectividad del método de la descontaminación. Se ha comprobado que la evaluación por cultivo con muestreo de superficies y/o análisis de bioluminiscencia ATP, son una forma viable de determinar en tiempo real la eficacia del método de descontaminación, en este estudio no se detectaron esporas viables en cultivo ni actividad metabólica por ATP en superficies.(10) En futuros estudios, podría complementarse el empleo de análisis cuantitativos de biocontaminantes por reacción en cadena de la polimerasa.
Este monitoreo mostró la propiedad antimicrobiana del ClO2 en un entorno de vida hospitalaria real contra un patógeno del grupo de importancia ESKAPE. La aspersión de ClO2 a 60 ppm durante 30 min puede asegurar el control de infecciones por Acinetobacter, lo cual, satisface la demanda de descontaminación de superficies hospitalarias a bajo costo. Igualmente, el uso de pruebas complementarias mostró la seguridad antimicrobiana de la habitación para el próximo paciente y conservó la integridad del hospital.
CONCLUSIONES
Un monitoreo en un entorno hospitalario real confirmó la efectividad del método de descontaminación con dióxido de cloro. La aspersión del mismo a una concentración de 60 ppm por 30 min fue segura para el personal e inactivó a las cepas multirresistentes de Acinetobacter. Este trabajo se distingue al proponer un método económico y eficaz para descontaminar habitaciones de hospitalización.
REFERENCIAS
1. Richet H, Fournier PE. Nosocomial Infections Caused by Acinetobacter baumannii A Major Threat Worldwide. Infect Control Hosp Epidemiol. 2006;27(7):645–6.
2. Shelanah F, Gray T, Gottlieb T. Healthcare-acquired infections: prevention strategies. Intern Med J. 2017;47(12):1341–51.
3. Chemaly RF, Simmons S, Dale C, Ghantoji SS, Rodriguez M, Gubb J, et al. The role of the healthcare environment in the spread of multidrug-resistant organisms: update on current best practices for containment. Ther Adv Infect Dis. 2014;2(3-4):79–90.
4. Noszticzius Z, Wittmann M, Kály-Kullai K, Beregvári Z, Kiss I, Rosivall L, et al. Chlorine Dioxide Is a Size-Selective Antimicrobial Agent. PLoS One. 2013;8(11):e79157.
5. Dancer SJ. How do we assess hospital cleaning? A proposal for microbiological standards for surface hygiene in hospitals. J Hosp Infect. 2004;56(1):10–5.
6. Moore G, Smyth D, Singleton J, Wilson P. The use of adenosine triphosphate bioluminescence to assess the efficacy of a modified cleaning program implemented within an intensive care setting. Am J Infect Control. 2010;38(8):617–22.
7. Morino H, Futatsukame M, Miura T, Shibata T. Effect of extremely low-concentration gaseous chlorine dioxide against surface Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii in wet conditions on glass dishes. BMC Res Notes. 2020;13(1):69.
8. Hinenoya A, Awasthi SP, Yasuda N, Shima A, Morino H, Koizumi T, et al. Chlorine Dioxide is a Better Disinfectant than Sodium Hypochlorite against Multi-Drug Resistant: Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii. Jpn J Infect Dis. 2015;68(4):276–9.
9. Espinal P, Martí S, Vila J. Effect of biofilm formation on the survival of Acinetobacter baumannii on dry surfaces. J Hosp Infect. 2012;80(1):56–60.
10. Sanna T, Dallolio L, Raggi A, Mazzetti M, Lorusso G, Zanni A, et al. ATP bioluminescence assay for evaluating cleaning practices in operating theatres: applicability and limitations. BMC Infect Dis. 2018;18(1):583.
FINANCIACIÓN
Los autores no recibieron financiación para el desarrollo de la presente investigación.
CONFLICTO DE INTERESES
Los autores declaran que no existe conflicto de intereses.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORÍA
Conceptualización: MAA y AAC.
Curación de datos: AAC y VTS.
Análisis formal: VTS.
Adquisición de fondos: MAA.
Investigación: MAA, AAC y VTS.
Metodología: MAA y AAC.
Administración del proyecto: MAA y AAC.
Recursos: MAA.
Supervisión: MAA.
Validación: MAA.
Visualización: MAA.
Redacción – borrador original: VTS.
Redacción – revisión y edición: MAA, AAC y VTS.